Ana səhifə

El orégano: propiedades, composición y actividad biológica de sus componentes


Yüklə 253 Kb.
səhifə2/2
tarix24.06.2016
ölçüsü253 Kb.
1   2

TABLA 5
Actividad antioxidante y anti-radical
del aceite esencial de orégano Mexicano
(Lippia graveolens Kunth)

Muestra

AOX1

AA2

ORR3

AAC4

Control (DMSO)

Trolox
125 mg/m


l250 mg/ml

BHT
110 mg/ml


ORÉGANO MEXICANO


Secado a la sombra
8 mg/ml
16 mg/ml
32 mg/ml
64 mg/ml

Secado al sol (38°C)


10 mg/ml
20 mg/ml
40 mg/ml
80 mg/ml

9.92a

5.49b


11.04c

31.63d


79.12e
82.63e
44.32f
41.17f

29.47g


20.01h
15.10i
6.69j

0

92.37a


94.86b

83.76c


52.62d
50.17d
67.96e
73.23e

82.49f


87.82g
90.04g
85.83f

1.0

0.08a


0.05b

0.20c


0.48d
0.50d
0.32e
0.30e

0.18f


0.12g
0.10h
0.14i

0.0

536.33a


756.98b

490.87c


249.51d
136.56e
355.93f
337.08f

399.38g


472.13h
432.60i
617.33j




a Letra diferente en la columna indica diferencias estadísticamente significativas 
(Tukey, α = 0.05).
1 Actividad antioxidante,
2 % de la inhibición de la coloración de β-caroteno,
3 Relación antioxidante,
4 Coeficiente de actividad antioxidante,
5 Actividad anti-radical.
(Adaptado de 27).

Las hierbas y especias como el orégano son también una fuente potencial de vitamina C y de otros compuestos antioxidantes como los carotenoides. En el orégano (O. vulgare) se ha encontrado un contenido de ácido ascórbico de 26 ± 3 mM/g, de luteína de 206 ± 6 mg/g y de zeaxantina de 44 ± 1mg/g (48).

El efecto antioxidante de los extractos metanólicos del orégano se debe a la presencia de ácido cafeico y rosmarínico. Los glicósidos son capaces de liberar compuestos volátiles por hidrólisis ácida o enzimática, por lo que pueden considerarse como precursores de sustancias antioxidantes en las plantas. Los extractos alcohólicos y étereos del clavo, la salvia, el orégano, el romero y el tomillo mostraron actividad antioxidante en todos los tipos de grasa que se han evaluado (49, 50). En el orégano, los compuestos activos, son derivados fenólicos de los ácidos cafeico y romérico (51). A partir de las hojas secas de orégano (O. vulgare L.) se ha identificado como principal antioxidante un glicósido fenólico (52). La timoquinona se ha encontrado como la aglicona mayoritaria en O. vulgare ssp. Hirtum. Las agliconas y el aceite esencial presentaron una actividad antioxidante equivalente e inhibieron la formación del hidroperóxido aún después de 80 días. Por su parte, el timol puro y la timoquinona tienen una actividad considerablemente menor, alcanzando un valor de peróxido de 250 mM/kg en tan sólo 30 y 22 días, respectivamente (15). El carvacrol, también contribuye a la actividad antioxidante (15, 53, 54).

En infusiones de L. citriodora, se ha encontrado actividad para atrapar radicales hidroxi y ácido hipocloroso, aunque también se ha observado un efecto prooxidante en concentraciones arriba de 4 mg/ml. Estas infusiones se caracterizan por la presencia de verbascosido, un compuesto fenil-etanoide ampliamente estudiado en cuanto a su actividad antioxidante, cuyo efecto protector se atribuye al residuo cafeoil o a la porción feniletilo (55).

Potencial Antimicrobiano
Existen múltiples estudios sobre la actividad antimicrobiana de los extractos de diferentes tipos de orégano. Se ha encontrado que los aceites esenciales de las especies del género Origanum presentan actividad contra bacterias gram negativas como Salmonella typhimurium, Escherichia coli, Klebsiella pneumoniae, Yersinia enterocolitica y Enterobacter cloacae; y las gram positivas como Staphylococcus aureus, Staphylococcus epidermidis, Listeria monocytogenes y Bacillus subtilis (56, 22). Tienen además capacidad antifungicida contra Cándida albicans, C.tropicalis, Torulopsis glabrata, Aspergillus Níger, Geotrichum y Rhodotorula; pero no contra Pseudomona aeruginosa (23). Se ha evaluado la actividad antimicrobiana de los componentes aislados, así como el del aceite esencial. Los fenoles carvacrol y timol poseen los niveles más altos de actividad contra microorganismos gram negativos, excepto para P. aeruginosa, siendo el timol más activo (23, 56). Otros compuestos, como el g-terpineno y r-cimeno no mostraron actividad contra las bacterias estudiadas (22, 23). Los valores de la concentración mínima inhibitoria (CMI) para los aceites esenciales se han establecido entre 0.28-1.27 mg/ml para bacterias, y de 0.65-1.27 mg/ml para hongos (22).

En el caso de E.coli O157:H7 existe una relación concentración/efecto a 625 ml/L con actividad bactericida después de 1 minuto de exposición al aceite, mientras que después de 5 minutos se requirieron 156 y 312 ml/L. Dicha acción antimicrobiana posiblemente se debe al efecto sobre los fosfolípidos de la capa externa de la membrana celular bacteriana, provocando cambios en la composición de los ácidos grasos. Se ha informado que las células que crecen en concentraciones subletales de carvacrol, sintetizan dos fosfolípidos adicionales y omiten uno de los fosfolípidos originales (57, 58).

Se ha demostrado que para los aceites de L. multiflora y L. chevalieri, los valores de CMI y de la concentración mínima bactericida (CMB) son más bajos para inhibir los microorganismos gram negativos (Salmonella enterica, Escherichia coli, Shigella disentería, Proteus mirabilis, Enterococcus faecalis) que para los gram positivos (Staphylococcus camorum, Staphylococcus aureus, Listeria innocua, Bacillus cereus). L. multiflora presenta alta actividad antimicrobiana debido a su alto contenido de timol y sus derivados. L. chevalieri contiene un alto porcentaje de p-cimeno, el cual ejerce un efecto antagónico con el carvacrol y el timol, lo que explica su baja actividad antimicrobiana (59, 60).

El extracto etanólico de una línea clonal de orégano inhibió la acción de Listeria monocytogenes en caldo y otros productos de carne (61). También se ha encontrado que el aceite esencial de orégano es muy valioso en la inhibicion de E. coli O157:H7 (62). Otros microorganismos como Acinetobacter baumanii, Aeromonas veronii biogroup sobria, Candida albicans, Enterococcus faecalis, Escherichia coli, Klebsiella pneumoniae, Pseudomonas aeruginosa, Salmonella enterica subsp. enterica serotype typhimurium, Serratia marcescens and Staphylococcus aureus, se han logrado inhibir gracias a la presencia de extractos de orégano (2% v/v) (63). Estos estudios tienen importantes implicaciones para la industria alimentaria.



Efecto antiparasítico
El aceite esencial de L. multiflora es considerado un agente efectivo contra la infestación por piojos (Pediculus humanus corporis y Pediculus humanus capitatis) y por el artrópodo Sarcoptes scabiei; incluso en mayor grado que el bencil benzoato, la droga mas comúnmente empleada contra estos parásitos. En esta especie de orégano, los componentes mayoritarios en su aceite son el cimeno (8%), limoneno (15%), linalol (34%), geraniol (20%) y timol (4%). Entre los compuestos monoterpénicos volátiles presentes comúnmente en aceites esenciales, es conocida la capacidad del terpineol y del α- y β-pineno para matar piojos, aunque estos compuestos sólo se encuentran en bajas cantidades en dicho aceite esencial (3%, 1% y 4% respectivamente) (64). El aceite esencial de L. multiflora posee actividad antimalaria en diluciones tan altas como 1/8000 y 1/12000 lo que representa una alternativa interesante contra esta enfermedad debido a su baja toxicidad (65). Los extractos de L. beriandieri poseen actividad antigiardia elevada, con una mortalidad de los trofozoitos del 90%, mayor que la causada por timidazol (79 %), la droga típica usada para el tratamiento de la giardiasis (66).

Acción Estrogénica
Los flavonoides son un grupo de fitoquímicos que poseen actividad hormonal. La habilidad de proteger contra la osteoporosis y enfermedades cardiovasculares, acciones atribuídas a estrógenos endónenos como el 17β-estradiol, ha fundamentado la acción estrogénica de los flavonoides. Por otro lado, algunos de ellos presentan actividad antiestrogénica pues han demostrado prevenir la formación de tumores de mama (67,68).

Se ha encontrado que algunos alimentos, hierbas y especias contienen una gran cantidad de sustancias con actividad estrogénica. Zava, et al. (69) demostraron que el orégano (O. vulgare) es una de las seis especias con más alta capacidad para ligar progesterona, junto con la verbena, la cúrcuma, el tomillo, el trébol rojo y la damiana. Además se cree que el orégano puede poseer una ligera actividad estrogénica in vivo cuando es consumido a través de los alimentos (69, 70). Sin embargo, se requiere más investigación para determinar con exactitud si los componentes del orégano posee actividad estrogénica.



Actividad insecticida
Los aceites esenciales de plantas representan una alternativa para la protección de los cultivos contra plagas (71). Algunos aceites esenciales y sus componentes poseen un amplio espectro de actividad contra insectos, ácaros, hongos y nemátodos, tales como Rhyzopertha dominica, Tribolium castaneum, y Sitophilus oryzae, plagas que atacan granos almacenados y contra Musca domestica (71, 72).

El aceite esencial de O. syriacum contiene un alto nivel de carvacrol (61%), el cual posee una concentración letal media (LC50) = 37.6 mg/L, seguido del timol (21.8%) con un LC50= 36 mg/L contra larvas del mosquito Culex pipiens molestus. Entre otros compuestos activos se tiene a la mentona, el 1,8-cineol, el linalol y el terpineol (73). Los aceites esenciales de O. majorana y O. compactum poseen una alta actividad insecticida contra huevos y adultos de Mayetiola destructor (74).



Capacidad antigenotóxica
La dieta es una fuente potencial de sustancias carcinogénicas a las que se exponen los humanos. Esto ha provocado un gran interés en buscar fuentes de nutrientes y de no-nutrientes que ayuden a prevenir o contrarrestar el efecto adverso que pudiesen ocasionar los aditivos sintéticos, tóxicos naturales, las sustancias generadas durante el procesamiento y los contaminantes accidentales. Se ha encontrado que algunos monoterpenos presentes en los aceites esenciales son inhibidores efectivos de la carcinogénesis. El aceite esencial de orégano tiene la capacidad de inducir un incremento en la actividad de la enzima destoxificante glutation S-transferasa (GST) cuando se administra oralmente, lo cual sugiere un potencial anticarcinogénico (75). Los monoterpenos con diferentes grupos funcionales tales como hidrocarbonos, aldehídos y cetonas son inhibidores in vitro de las monooxigenasas CYP2B1, por lo que pueden alterar la biotransformación de sustancias tóxicas (76). Algunos modelos animales para cáncer han demostrado que varios monoterpenos poseen propiedades anticarcinogénicas actuando a diferentes niveles moleculares y celulares (77). Por ejemplo el carvacrol (50 y 100mM) reduce en 25 y 35 %, respectivamente, el número de células de melanoma murino (B16F10), línea celular con un potencial metastásico elevado (78). Los extractos acuosos de O. vulgare y O. majorama presentaron importantes efectos antimutagénicos (79, 80). La galangina y la quercetina, obtenidas de extractos metanólicos de hojas de orégano (O. vulgare), son flavonoides con actividad antimutagénica contra sustancias encontradas comúnmente en los alimentos (81). Por ejemplo, en nuestro laboratorio hemos encontrado un efecto protector del aceite esencial de orégano mexicano (L. graveolens) en la cepa TA98 de S. thypimurium, contra 1-nitropireno, con una reducción de la mutagenicidad del 46% a una dilución de 1.25 x 10-5 (82). La cantidad de galangina y quercetina requerida para inhibir el 50% de la mutagenicidad de 20 ng del carcinógeno Trp-P-2 fue de 0.12 y de 0.81 mg, respectivamente, mientras que los extractos de hexano, cloruro de metilo y acetato de etilo de orégano presentaron la mayor actividad inhibitoria (68-72%) (81).

El tectol y la lipsidoquinona presentes en L. sidoides mostraron inhibición in vitro contra células humanas de leucemia promielocítica (HL60) y leucemia linfoblástica aguda (CEM) (83). En L. dulcis, (+)-animol inhibe células de melanoma murino (B16F10). También las celulas HeLa fueron muy sensibles a los flavonas como la eupafolina (84). Se sabe que los patrones de sustitución en los anillos A y B tienen diferente influencia en la actividad contra diferentes células tumorales. El aceite de O. vulgare (dilución hasta 1:10000) presentó altos niveles de citotoxicidad contra células HeLa y de cáncer ovárico humano (85, 86). También O. majorama presenta actividad antitumoral y citotóxica contra líneas tumorales (87 - 89).

Por otro lado, varios estudios clínicos han demostrado que Oregano spp presenta alergenicidad, por lo que se debe evitar el consumo excesivo de O vulgare y O. majorama durante el embarazo además de sus propiedades abortivas (90).

Usos y aplicaciones industriales
El orégano (O. vulgare) tiene usos medicinales, culinarios y cosméticos. Es utilizado en forma fresca y seca en la cocina mediterránea y de América Latina. Las especies de Lippia tiene usos tradicionales y farmacológicos tales como culinarios, analgésicos, antiinflamatorios, antipiréticos, sedantes, antidiarréico, tratamiento de infecciones cutáneas, antifúngico, tratamiento de desórdenes hepáticos, diurético, antihipertensivo, remedio de desórdenes menstruales, antimicrobiano, repelente, antimalaria, antiespasmódico, tratamiento de enfermedades respiratorias, de sífilis y gonorrea, contra la diabetes, abortivo y anestésico local (13, 91).

Debido a la capacidad antioxidante de los extractos acuosos del orégano, se sugiere que éstos pueden ser empleados como sustituto de los antioxidantes sintéticos (42). La peroxidación lipídica es uno de los principales problemas en la industria de los cárnicos, durante el procesamiento, la preparación y el almacenamiento (Figura 5). En un intento por disminuír este problema se ha probado el efecto antioxidante de hojas, flores, extractos y aceite esencial de orégano con resultados positivos. Otra forma interesante de evitar la peroxidación de los ácidos grasos en la carne es utilizando los aceites esenciales del orégano como suplemento en la alimentación de los animales destinados para consumo humano.



FIGURA 5
Inhibición de la peroxidación lipídica
de algunas especies y aditivos comunes
(Adaptado de 103)

En el caso de aves como el pavo y el pollo cuya alimentación es enriquecida con aceite esencial de orégano se observa una reducción significativa de la oxidación lipídica en la carne cruda y cocinada mantenida en refrigeración, lo cual representa una buena alternativa al uso del a-tocoferol. Lo anterior es una evidencia de que los compuestos antioxidantes presentes en orégano, son absorbidos y entran al sistema circulatorio después de ser ingeridos (92-96). Sus propiedades antimicrobianas acentúan su uso potencial en diferentes formulaciones de alimentos, sobre todo en aquellas susceptibles a ser colonizadas por bacterias como Salmonella spp, E. coli, Bacillus, entre otras. Se ha observado que en carne almacenada en empaques al vacío y en atmósferas modificadas, la adición del aceite esencial de orégano es un medio efectivo para controlar el deterioro del producto aumentando con esto la inocuidad de su consumo (97, 98).




CONCLUSIONES
El creciente interés por el uso de extractos naturales como alternativa para la prevención y tratamiento de enfermedades ha revelado un importante potencial del orégano. Se ha demostrado que el orégano contiene sustancias antioxidantes, por lo que no sólo es benéfico para la salud humana, sino que además puede sustituir los aditivos sintéticos de los alimentos. Los aceites esenciales del orégano son también inhibidores de la mutagenicidad, propiedad que ha despertado el interés por este tipo de hierbas, como posible tratamiento contra el cáncer. Por otro lado, el extracto de orégano puede funcionar como antibatericida e insecticida, siendo igual o incluso más efectivo que los compuestos típicamente utilizados para estos propósitos. Los resultados de los experimentos con orégano confirman el potencial de esta planta y motivan su mejor aprovechamiento. Es de gran importancia explorar más los beneficios del orégano y entender más a fondo los procesos que le dan a esta especia sus propiedades biológicas tan diversas y atractivas.


AGRADECIMIENTOS
Esta publicación fue posible gracias al financiamiento de la Agencia para el Desarrollo Internacional (US-AID) proporcionado a través de la Oficina de la Asociación de Enlace para la Cooperación Universitaria para el Desarrollo (Association Liaison Office for University Cooperation in Development). Programa TIES-ENLACES, University of Illinois y Universidad Autónoma de Querétaro, México.


REFERENCIAS

  1. Pierce A. Practical guide to natural medicines. The American Pharmaceutical Association. A Stonesong Press Book. William Morrow and Company, Inc. New York. 1999; p 728.

  2. Nakatani N. Natural antioxidants from spices. In: Ho, C., Lee, C. Y., and Huang, M. Phenolic compounds in food and their effects on health II. American Chemical Society. 1992; Chap. 6: 72-85.

  3. Skuola M, Gotsiou P, Naxakis G, Johnson CB. A chemosystematic investigation on the mono- and sesquiterpenoids in the genus Origanum (Labiatae). Phytochem. 1999; 52: 649-657.

  4. Lawrence BM. The botanical and chemical aspects of oregano. Perfum. Flavorist. 1984; 9 (5): 41-44, 49-51.

  5. Russo M, Galletti GC, Bocchini P, Carnacini A. Essential oil chemical composition of wild populations of Italian oregano spice (Origanum vulgare ssp. hirtum (Link) Ietswaart): A preliminary evaluation of their use in chemotaxonomy by cluster analysis. 1. Inflorescences. J. Agric. Food Chem. 1998; 46: 3741-3746.

  6. Kokkini S, Karousou R, Dardioti A, Krigas N, Lanaras T. Autumn essential oils of greek oregano. Phytochem. 1997; 44 (5): 883-886.

  7. Martínez-Salvador M. Caracterización y evaluación del potencial productivo de orégano (Lippia berlandieri Shauer) en el municipio de Mapimi, Durango. Universidad Autónoma Chapingo. Chapingo, Mex. (México). Departamento de Zonas Aridas. Chapingo, México (México). 1997. 62 p. + mapa.(Tesis).

  8. Martínez-Domínguez M. Guía para el aprovechamiento del orégano Lippia berlandieri Schauer, en la zona norte de Jalisco. Guadalajara, Jalisco, México. Campo Experimental Forestal Los Colomos. CIR Pacifico Centro. 1993. 11 p. Folleto para productores. Campo. Campo experimental los Colomos México. No. 1 INIFAP. C.E. Forestal Los Colomos. Apdo. Postal 6-163. Guadalajara, Jal. 44600. (México).

  9. Alarcon-Bustamante M. Método práctico para la predicción del rendimiento de hoja seca de orégano (Lippia graveolens HBK). Cd. Madera, Chih. (México). Campo Experimental Madera. CIR Norte Centro. Sep 1993. 11 p. Folleto Técnico. Campo Experimental Madera, México. No.1 INIFAP. C.E. Madera. Aldama s/n, Cd. Madera,

  10. Martínez-Domínguez M. Detección y evaluación de orégano (Lippia berlandieri Shawer) en las zonas del norte de Jalisco y suroeste de Zacatecas. Universidad Autónoma Chapingo, Chapingo (México). División de Ciencias Forestales. 1990. 145 p. (Tesis)

  11. Martínez-Domínguez M. Innovación tecnológica para eficientar el rendimiento en cosecha de orégano Lippia berlandieri Shawer. Instituto Nacional de Investigaciones Forestales y Agropecuarias (México). Centro Regional de Investigación Forestal y Agropecuaria del Pacífico Centro. Estado de Jalisco. Reunion Científica Forestal y Agropecuaria del Centro de Investigación Regional del Pacífico Centro. Resumenes. Guadalajara, Jalisco (México). 1991. No. 5 p. 104.

  12. Dewick PM. Medicinal natural products. A biosyntetic approach. John Wiley & sons. 1997; Chap. 5: 152-213.

  13. Pascual ME, Slowing K, Carretero E, Sánchez Mata D, Villar A. Lippia: traditional uses, chemistry and pharmacology: A review. J. Ethnopharmacol. 2001: 76, 201-214.

  14. Justesen U, Knuthsen P. Composition of flavonoids in fresh herbs and calculation of flavonoid intake by use of herbs in traditional Danish dishes. Food Chemistry. 2001; 73, 245-250.

  15. Milos M, Mastelic J, Jerkovic I. Chemical composition and antioxidant effect of glycosidically bound volatile compounds from oregano (Origanum vulgare L. ssp. hirtum). Food Chem. 2000; 71, 79-83.

  16. Gerothanassis IP, Exarchou V, Lagouri V, Troganis A, Tsimidou M, Boskou D. Methodology for identification of phenolic acids in complex phenolic mixtures by High-Resolution Two-Dimensional Nuclear Magnetic Resonance. Application to methanolic extracts of two Oregano species. J. Agric. Food Chem. 1998; 46, 4185-4192.

  17. Rastrelli L, Caceres A, Morales C, De Simone F, Aquino R. Iridoids from Lippia gaveolens. Phytochem. 1998; 49 (6), 1829-1832.

  18. Wagner KH, Elmadfa I. Biological relevance of terpenoids. Overview focusing on mono-, di- and tetraterpenes. Ann. Nutr. Metabol. 2003; 47 (3-4): 95-106.

  19. Hutchings A, van Staden J. Plants for stress-related ailments in traditional Zulu, Xhosa and Sotho medicine. Part 1: Plants used for headaches. J. Ethnopharmacol. 1994; 43(2): 89-124.

  20. Robbers J E, Speedie M K, Tyler VE. Pharmacog. Pharmabiotech. 1996; Chap. 6: 80-107.

  21. D'antuono LF, Galletti GC, Bocchini P. Variability of essential oil content and composition of Origanum vulgare L. Populations from a north mediterranean area (Liguria region, north Italy). Ann. Bot. 2000; 86: 471-478.

  22. Aligiannis N, Kalpoutzakis E, Mitaku S, Chinou IB, Composition and antimicrobial activity of the essential oils of two Origanum species. J. Agric. Food Chem. 2001; 49: 4168-4170.

  23. Sivropoulou A, Papanikolaou E, Nikolaou C, Kokkini S, Lanaras T, Arsenakis M. Antimicrobial and cytotoxic activities of Origanum essential oils. J. Agric. Food Chem. 1996; 44: 1202-1205.

  24. Pino JA, Boroes P, Fuentes V, Martinez MA, Rosado A. Production of oregano in Cuba: An alternative to importation. Alimentaria 1997; 35 (280): 69-71.

  25. Economakis C, Skaltsa H, Demetzos C, Sokovic M, Thanos CA. Effect of phosphorus concentration of nutrient solution on the volatile constituents of leaves and bracts of Origanum dictamnus. J. Agric. Food Chem. 2002; 50: 6276-6280.

  26. Wilkins MB. The physiology of plant and development, McGraw-Hill. 1998-University of California-Small Farm Center. Culture Information for Oregano.

  27. Lecona-Uribe S, Loarca-Piña F G, Arcila-Lozano C, Díaz-Moscoso C, Ocampo R. Nutraceutical potential of Mexican oregano (Lippia graveolens K). IFT Annual Meeting, 2003; 14E-28.

  28. De Mastro, G. Crop domestication and variability within accessions of Origanum genus. In: Padulosi., S., editor. Oregano. Promoting the conservation and use of underutilized and neglected crops. Proceedings of the IPGRI International Workshop on Oregano, 8-12 May 1996. CIHEAM, Valenzano (Bari), Italy. Institute of Plant Genetics and Crop Plant Research, Gatersleben/International Plant Genetic Resources Institute, Rome Italy. 1997; p. 34-48.

  29. Chlodwig F, Novak J. Breeding of Origanum species. In: Padulosi., S., editor. Oregano. Promoting the conservation and use of underutilized and neglected crops. Proceedings of the IPGRI International Workshop on Oregano, 8-12 May 1996. CIHEAM, Valenzano (Bari), Italy. Institute of Plant Genetics and Crop Plant Research, Gatersleben/International Plant Genetic Resources Institute, Rome Italy. 1997; p. 49-56.

  30. Marzi, V. Agricultural practices for oregano. In: Padulosi., S., editor. 1997 Oregano. Promoting the conservation and use of underutilized and neglected crops. 14. Proceedings of the IPGRI International Workshop on Oregano, 8-12 May 1996. CIHEAM, Valenzano (Bari), Italy. Institute of Plant Genetics and Crop Plant Research, Gatersleben/International Plant Genetic Resources Institute, Rome Italy. 1997; p. 61-67.

  31. Putievsky E, Dudai N, Ravid U. Cultivation, selection and conservation of oregano species in Israel. In: Padulosi, S., editor. Oregano. Promoting the conservation and use of underutilized and neglected crops. 14. Proceedings of the IPGRI International Workshop on Oregano, 8-12 May 1996. CIHEAM, Valenzano (Bari), Italy. Institute of Plant Genetics and Crop Plant Research, Gatersleben/International Plant Genetic Resources Institute, Rome Italy. 1997; p. 102-109

  32. Thomann RJ, Ehrich J, Bauermann U. Destillation and use of essential oils from dill, celery, lovage and parsley made in Germany. Acta Hortic. 1993; 333:101-111.

  33. Simándi B, Oszagyán M, Lemberkovics É, Kéry Á, Kaszács J, Thyrion F, Mátyás T. Supercritical carbon dioxide extraction and fractionation of oregano oleoresin. Food Res. Int. 1998; 31 (10): 723-728.

  34. McGimpsey, J. Oregano. Origanum vulgare. Crop & Food research. 1993. http://www.crop.cri.nz/psp/broadshe/oregano.htm

  35. Uribe-Hernández CJ. The essential oil of Lippia graveolens H.B. K. from Jalisco México. J. Essential Oil Res. 1992; 4 (6): 647-649.

  36. Vernin G, Lageot C, Gaydou E, Parkanyi C. Analysis of the essential oil of Lippia graveolens HBK from El Salvador. Flavour Fragrance J. 2001; 16 (3): 219-226.

  37. Baricevik D, Bartol T. In: Oregano. The genera Origanum and Lippia. Medicinal and Aromatic Plants-Industrial Profiles. Edited by Spiridon E. Kintzios, Athens, Greece. Taylor and Francis. London and New York. 2002. Chap.8. p 177-213.

  38. Kahkoren MP, Hopia AI, Vucrela HJ, Rauha J-P, Pihlaja, Kujala TS, Heinonen M. Antioxidant activity of plant extracts containing phenolic compounds. J. Agric. Food Chem. 1999; 47: 3954-3962.

  39. Azuma K, Ippoushi K, Ito H, Higashio H, Terao J. Evaluation of antioxidative activity of vegetable extracts in linoleic acid emulsion and phospholipid bilayers, J. Sci. Food and Agric. 1999; 79: 2010-2016.

  40. Shahidi F, Janitha PK, Wanasundara PD. Phenolic Antioxidants. Crit. Rev. Food Sci. Nutr. 1992; 32: 67-103.

  41. Dragland S, Senoo H, Wake K, Holte K, Blomhoff R. Several culinary and medicinal herbs are important sources of dietary antioxidants. Am Soc Nutr Sci. 2003; 133(5): 1286-1290.

  42. Martínez-Tomé M, Jiménez AM, Ruggieri S, Frega N, Strabbioli R, Murcia MA. Antioxidant properties of Mediterranean spices compared with common food additives. J. Food Protect. 2001; 64 (9): 1412-1419.

  43. Moure A, Cruz J M, Franco D, Domínguez J M, Sineiro J, Domínguez H, Núñez M J and Parajó J C. Natural antioxidants from residual sources. Food Chem. 2001; 72(2): 145-171.

  44. Deighton N, Gridewell S M, Deans S J, Groodman B A. Identification by EPR spectroscopy of Carvacrol and Thymol as the major sources of free radicals in the oxidation of plant essential oils. J. Sci. Food Agric. 1993; 63: 221-225.

  45. Baratta MT, Dorman HJD, Deans SJ, Biondi DM, Ruberto G. Chemical composition, antimicrobial and antioxidative activity of laurel, sage, rosemary, oregano and coriander essential oils. J. Essent. Oil Res. 1998; 10(6): 618-627.

  46. Baratta MT, Dorman HJD, Deans SJ, Figueiredo AC, Barroso JG, Ruberto G. Antimicrobial and antioxidant properties of some commercial essential oils. Flavour Fragance J. 1998; 13: 235-244

  47. Madsen HL, Rud Nielsen B, Bertelsen G, Skibsted LH. Screening of antioxidative activity of spices. A comparison between assays based on ESR spin trapping and electrochemical measurement of oxygen consumption. Food Chem. 1996; 57 (2): 331-337.

  48. Calucci L, Pinzino C, Zandomeneghi M, Capocchi A, Ghiringhelli S, Saviozzi F, Tozzi S, Galleschi L. Effects of g-irradiation on the free radical and antioxidant contents in nine aromatic herbs and spices. J. Agric. Food Chem. 2003; 51: 927-934.

  49. Shahidi F, Naczk M. Antioxidant properties of food phenolics. In: Food phenolics. Sources, chemistry, effects, applications. Technomic. Pub, Co., Inc., 1995; 8:267.

  50. Madhavi DL, Singhal RS, Kulkarni PR. Technological aspects of food antioxidants. In: Madhavi, D.L., Deshpande, S. S. and Salunkhe, D.K. (eds). Food Antioxidants. Technological, toxicological and health perspectives. Marcel Dekker, Inc. 1996; 4:159-265

  51. Rajalakshmi D, Narasimhan S. Food antioxidants: sources and methods of evaluation. In: Madhavi, D.L., Deshpande, S. S. and Salunkhe, D.K. (eds). Food Antioxidants. Technological, toxicological and health perspectives. Marcel Dekker, Inc. 1996; 3:65-157

  52. Nakatani N, Kikuzaki H. A new antioxidative glycoside isolates from oregano. Agric. Biol. Chem. 1987; 51:2727.

  53. Exarchou V, Nenadis N, Tsimidou M, Gerothanassis IP, Troganis A, Boskou D. Antioxidant activities and phenolic composition of extracts from greek oregano, greek sage, and summer savory. J. Agric. Food Chem., 2002; 50: 5294-5299.

  54. Vichi S, Zitterl-Eglseer K, Jugl M, Franz Ch. Determination of the presence of antioxidants deriving from sage and oregano extracts added to animal fat means of assessment of the radical scavenging capacity by photochemiluminescence análisis. Nahrung/Food. 2001; 45 (2): 101-104.

  55. Valentão P, Fernandes E, Carvalho F, Andrade PB, Seabra RM, Bastos M de L. Studies on the antioxidant activity of Lippia citriodora infusion: Scavenging effect on superoxide radical, hidroxyl radical and hypochlorus acid. Biol. Pharm. Bull. 2002; 25(10): 1324-1327.

  56. Elgayyar M, Draughon F., Golden DA, Mount JR. Antimicrobial activity of essential oils from plants against selected pathogenic and saprophytic microorganisms. J. Food Protect. 2001; 64 (7): 1019-1024.

  57. Burt SA, Reinders RD, Antibacterial activity of selected plant essential oils against Escherichia coli O157:H7. Lett Applied Microbiol. 2003; 36: 162-167.

  58. Ultee A, Kets EPW, Alberda M, Hoekstra FA, Smid EJ. Adaptation of food-borne pathogen Bacillus cereus to carvacrol. Arch. Microbiol. 2000; 174: 233-238.

  59. Bassole IHN, Ouattara AS, Nebie R, Ouattara CAT, Kabore ZI, Traore SA. Chemical composition and antibacterial activities of the essential oils of Lippia chevalieri and Lippia multiflora from Burkina Faso. Phytochem. 2003; 62(2): 209-212.

  60. Cosentino S, Tuberoso CIG, Pisano B, Satta M, Mascia V, Arzedi E, Palma, F. In-vitro antimicrobial activity and composition of Sardinian Thymus essential oils. Lett. Appl. Microbiol. 1999; 29: 130-135.

  61. Saeberg AC, Labbe RG, Shetty K. Inhibition of Listeria monocytogenes by elite clonal extracts of oregano (Origanum vulgare). Food Biotechnol. 2003; 17 (2): 129-149.

  62. Sagdic O, Kuscu A, Ozcan M, Ozcelik S. Effects of Turkish spice extracts at various concentrations on the growth of Escherichia coli O157:H7. Food Microbiol. 2002; 19 (5): 473-480.

  63. Hammer KA, Carson CF, Riley TV. Antimicrobial activity of essential oils and other plant extracts. J. Appl. Microbiol. 1999; 86 (6): 985-990.

  64. Oladimeji FA, Orafidiya OO, Ogunniyi TAB, Adewunmi TA. Pediculocidal and scabicidal properties of Lippia multiflora essential oil. J. Ethnopharmacol. 2000; 72: 305-311.

  65. Valentin A, Pélissier Y, Benoit F, Marion C, Kone D, Mallie M, Bastide J-M, Bessière J-M. Composition and antimalarial activity in vitro of volatile components of Lippia multiflora. Phytochem. 1995; 40 (5): 1439-1442.

  66. Ponce-Macotela M, Navarro-Alegria I, Martinez-Gordillo MN, Alvarez-Chacon R. In vitro effect against Giardia of 14 plant extracts. Rev. Invest. Clin. 1994; 46(5): 343-347.

  67. Frigo DE, Duong BN, Melnik LI, Schief LS, Collins-Burow BM, Pace DK, McLachlan JA, Burow ME. Flavonoid phytochemicals regulate activator protein-1 signal transduction pathways in endometrial and kidney stable cell lines. Am. Soc. Nutr. Sci. 2002; 132(7): 1848-1853.

  68. Mauvais-Jarvis P, Kuttenn F, Gompel A. Estradiol/progesterone interaction in normal and pathologic breast cells. Annals New York Academy Sci, 1986; 464: 152-167.

  69. Zava DT, Dollbaum CM, Blen M. Estrogen and progestin bioactivity of foods, herbs and spices. Soc. Exp. Biol. Med. 1998; 217(3): 369-378.

  70. Howes M-JR, Houghton PJ, Barlow DJ, Pocock VJ, Milligan SR, Assessment of estrogenic activity in some common essential oil constituents. J. Pharmacy Pharmacol. 2002; 54: 1521-1528.

  71. Isman M. Plant essential oils for pest and disease management. Crop Protection. 2000; 19: 603-608.

  72. Prates HT, Santos JP, Waquil JM, Fabris JD, Oliveira AB, Foster JE. Insecticidal activity of monoterpens against Rhyzopertha dominica (F.) and Tribolium castaneum (Herbs). J. Stored Prod. Res. 1998; 34 (4): 243-249.

  73. Traboulsi AF, Taoubi K, El-Haj S, Bessiere JM, Rammal S, Insecticidal properties of essential plant oils against the mosquito Culex pipiens molestus (Diptera: Culicidae). Pest Management Sci. 2002; 58: 491-495.

  74. Lamiri A, Lhaloui S, Benjilali B, Berrada M. Insecticidal effects of essential oils against Hessian fly, Mayetiola destructor (Say). Field Crops Res. 2001; 71: 9-15.

  75. Lam LKT, Zheng B. Effects of essential oils on Glutathione S-transferase activity in mice. J. Agric. Food Chem. 1991; 39, 660-662.

  76. De-Oliveira ACAX, Ribeiro-Pinto LF, Paumgartten FJR. In vitro inhibition of CYP2B1 monooxygenase by β-myrcene and other monoterpenoid compound. Tox Lett. 1999; 92: 39-46.

  77. Loza-Tavera H. Monoterpenes in essential Olis. Biosíntesis and properties. Adv. Exp. Med. Biol. 1999; 464: 49-62.

  78. He L, Mo H, Hadisusilo S, Quresh, AA, Elson CE. Isoprenoids suppress the growth of murine B16 melanomas in vitro and in vivo. Am Soc Nutr Sci. 1997; 127(5): 668-673.

  79. Ueda S, Kuwabara Y, Hirai N, Sasaki H, Sugahara T. Antimutagenic capacities of different kinds of vegetables and mushrooms. J. Japn Soc. Food Sci. Technol. 1991; 38 (6): 507-514.

  80. Nakate M. Kanazawa K, Mizuno M, Ueno N, Kobayashi T, Danno G, Minamoto S. Herb-water extracts markedly suppress the mutagenicity of Try-P-2. Agric. Biol. Chem. 1989; 53 (5): 1423-1425.

  81. Kanazawa K, Kawasaki H, Samejima K, Ashida H, Danno G. Specific desmutagens (antimutagens) in oregano against a dietary carcinogen, Trp-P-2, are galangin and quercetin. J. Agric. Food Chem. 1995; 43: 404-409.

  82. Arcila C, Loarca-Piña G, Lecona-Uribe S, González de Mejía E. Biological activity and composition of essential oil from Mexican oregano. Botanical and Dietary Supplements for Woman's Health: Frontiers in Research. Functional Foods for Health Program 12th Annual Conference, July 9-11 2003; Schaumburg, IL.

  83. Costa SMO, Lemos TLG, Pessoa OD., Pessoa C, Montenegro RC. Braz-Filho R. Chemical constituents from Lippia sidoides and cytotoxic activity. J. Nat. Prod. 2001; 64: 792-795.

  84. Abe F, Nagao T, Okabe H. Antiproliferative constituents in plants 9. Aerial parts of Lippia dulcis and Lippia canescens. Biol. Pharm. Bull. 2002; 25(7): 920-922.

  85. Sivropoulous A, Papanikolaou E, Nikolaou C, Kokkini S, Lanaras T, Arsenakis M. Antimicrobial and cytotoxic activities of Origanum essential oils. J.Agric. Food Chem. 1996; 44 (5): 1202-1205.

  86. He L, Mo H, Hadisusilo S, Qureshi AA, Elson CE. Isoprenoids suppress the growth of Murine B16 melanoma in vitro and in vivo. Biochemical and molecular roles of nutrients. Am. Soc. Nutr. Sci. 1997; 127(5): 668-674.

  87. Assaf MH, Ali AA, Makboul MA, Beck JP, Anton R. Preliminary study of phenolic glycosides from Origanum majorama, quantitative estimation of arbutin cytotoxicity activity of hydroquinone. Planta-Medica 1987; 53 (4): 343-345.

  88. Okuyama T, Matsuda M, Masuda Y, Baba M, Masubuchi H, Adachi M, Okada Y, Hashimoto T, Zou LB, Nishino H. Studies on cancer bio-chemoprevention of natural resources. X. Inhibitory effect of species on TPA-enhanced 3H-choline incorporation in phospholipids of C3H 10T ½ cells and TPA-induced mouse ear edema. Clin. Pharm. J. 1995; 47 (5): 421-430.

  89. Hirobe C, Qiao ZS, Takeya K, Ibokawa H. Cytotoxic principles from Majorama Syriaca. Nat. Med. 1998; 52 (1): 74-77.

  90. Brinker F. Herb contraindications and drug interactions. Eclectic Medical Publ. Sandy, Oregon 1998; 263 pp.

  91. Tárrega I, Rivas F. Essential oils from wild and micropropagated plants of Origanum bastetanum. Phytochem. 1998; 48 (8): 1347-1349.

  92. Botsoglou NA, Grigoropoulou SH, Botsoglou E. Govaris A, Papageorgiou G. The effects of dietary orégano essential oil and a-tocopheryl acetate on lipid oxidation in raw and cooked turkey during refrigerated storage. Meat Sci. 2003; 63(3): 1193-1200.

  93. Botsoglou NA, Govaris A, Botsoglou EN, Grigoropoulou SH, Papageorgiou G. Antioxidant activity of dietary oregano essential oil and alpha-tocopheryl acetate supplementation in long-term frozen stored turkey meat. J. Agric. Food Chem. 2003; 51(10): 2930-2936.

  94. Abdalá AE, Roozen JP. The effects of stabilized extracts of sage and oregano on the oxidation of salad dressings. Eur. Food Res. Technol. 2001; 212: 551-560.

  95. Botsoglou NA, Christaki E, Fletouris DJ, Florou-Paneri P, Spais AB. The effect of dietary oregano essential oil on lipid oxidation in raw and cooked chicken during refrigerated storage. Meat Sci. 2002; 62: 259-265.

  96. Botsoglou NA, Fletouris DJ, Florou-Paneri P, Christaki E, Spais AB, Inhibition of lipid oxidation in long-term frozen stored chicken meta by dietary oregano essential oil and a-tocopheryl acetate supplementation. Food Res Int. 2003; 36: 207-213.

  97. Skandamis P, Tsigarida E, Nychas G-JE. The effect of oregano essential oil on survival/death of Salmonella typhimurium in meat stored at 5° C under aerobic, VP/MAP conditions. Food Microbiol. 2002; 19: 97-103.

  98. Yousif AN, Durance TD, Scaman CH, Girard B. Headspace volatiles and physical characteristics of vacuum-microwave, air, and freeze-dried oregano (Lippia berlandieri Schauer). J. Food Sci. 2000; 65 (6): 926-930.

  99. Ruberto G, Baratta MT, Sari M, Kaâbeche M. Chemical composition and antioxidant activity of essential oils from Algerian Origanum glandulosum desf. Flavour Fragrance J. 2002; 17: 251-254.

  100. Alaniz-Gutierrez L. Contribución al estudio de la calidad de aceite esencial en oregano Lippia graveolens H.B.K. Universidad Autonoma Chapingo. Chapingo, Mex. (México). Departamento de Zonas Aridas. Chapingo, Mexico (México). 1998. 46 p. Tesis (Ingeniero Agronómo en Sistemas Agrícolas de Zonas Aridas).

  101. Takácsová M, Príbela A, Faktorová. Study of the antioxidative effects of thyme, sage, juniper and oregano. Die Nahrung. 1995; 39: 241-243.

  102. Dorman HJD, Surai P, Deans SG. In vitro antioxidant activity of a number of plant essential oils and phytoconstituents. J. Essent. Oil Res. 2000; 12 (2): 241-248.

  103. Avila-Sosa R, Avila-Camacho A, Torres-Muñoz JV. Gastélum-Franco MG, Nevárez-Moorillón GV. Antioxidant and antimicrobial capacity of Mexican Orégano. IFT Annual Meeting, 2002; 46C-32.



Recibido: 22/08/2003
Aceptado: 10/12/2003

HOME > EDICIONES > Año 2004, Volumen 54 - Número 1

Ir al principio







Artículo No. 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16








PRIVACIDAD | ACCESIBILIDAD
ALAN-VE ISSN 0004-0622 - Depósito Legal: pp 199602DF83
Sociedad Latinoamericana de Nutrición
Producción editorial en Venezuela: Capítulo Venezolano - RIF: J-30843129-0
Urbanización Santa María, primera transversal, No. 417-214, Planta Alta
Tele-Fax: (+58-212) 283.8618
E-mail info@alanrevista.org
Código Postal: 1070
Caracas - Venezuela






1   2

Verilənlər bazası müəlliflik hüququ ilə müdafiə olunur ©atelim.com 2016
rəhbərliyinə müraciət