Hasandede ve Kalecik karası üzüm çeşitlerinde anter kültüründen kallus elde edilmesi amaçlanmıştır. Anter kültürü için en uygun mikrospor gelişme dönemi olan tek çekirdekli mikrospor aşamasının, morfolojik olarak 0.3-1.0 mm uzunlukta soluk yeşil renkli anterlerde bulunduğu belirlenmiştir. Bu anterlerin, korolla rengi koyu yeşilden hafifçe sarıya dönen ve henüz açılmamış çiçek tomurcuklarında bulunduğu görülmüştür. Çiçek tomurcukları, +4oC’de 72, 96 ve 120 saatlik ön uygulamalara tabi tutulmuş, kültüre alınan anterlerdeki gelişme oranları ve farklılaşmalar belirlenmiştir. Anterlere uygulanan soğuk şokları, çeşitler ve ortama katılan hormon kombinasyonlarına göre, anter gelişme oranları bakımından farklı sonuçlar vermiştir. Ancak kallus oluşumu, besin ortamı bileşiminde yapılan değişiklikler sonucunda soğuk uygulaması yapılmayan Hasandede çeşidi anterlerinden elde edilebilmiştir. Mineral tuz içeriği iki kat artırılmış modifiye NN ortamı, Hasandede çeşidi anterlerinde %8.5 oranında embriyogenik yapılı kallus oluşumu sağlamıştır. Kalecik karası çeşidinden androgenetik kallus elde edilememiştir.
2. T.C.Ziraat Bankası Ankara
(*) Bu çalışma, Ankara Üniversitesi Araştırma Fonunca desteklenen 931101104 no’lu projeden hazırlanmıştır.
Hasandede ve Kalecik karası üzüm çeşitlerinde beş değişik büyüklükteki tomurcuklardan ve dolayısıyla bunların içindeki anterlerden alınan yatay kesitlerde mikrospor gelişme dönemleri saptanmıştır. Anter kültürü için en uygun olduğu bildirilen mikrospor gelişme aşaması olan “ tek çekirdekli mikrospor” aşamasının, morfolojik olarak 0.3-1.0 mm uzunlukta, şeffaf görünümlü soluk yeşil renkli anterlerde bulunduğu belirlenmiştir. Bu anterlerin korolla rengi koyu yeşilden hafifçe sarıya dönen ve henüz açılmamış çiçek tomurcuklarında bulunduğu görülmüştür.
Anterlere uygulanan soğuk şoklarının süreleri, çeşitler bazında farklı gelişme oranlarına neden olmuştur. Örneğin 72 saatlik soğuk uygulaması, her iki hormon kombinasyonunda da Hasandede çeşidinde anterlerde gelişme sağlayamazken, Kalecik karası çeşidinde 2,4-D/BAP kombinasyonunda %7.1’lik anter gelişme oranına neden olmuştur. 96 saatlik soğuk uygulaması ise anter gelişme oranları bakımından Hasandede çeşidinde Kalecik karası’na göre daha olumlu etki yapmıştır. 120 saat uygulamasında Hasandede çeşidi anterleri NAA/kinetin kombinasyonunda % 6.8 değerine sahip olmuş, diğer hormon kombinasyonunda ise çok düşük bir performans göstermiştir (%0.8). Kalecik karası çeşidi ise 120 saat soğuk şoku uygulamasından sonra %4.6 ve 2.4’lük anter gelişme oranları vermiştir. Kontrol da dahil olmak üzere gelişen anterler üzerinde sağlıklı ve gelişmesine devam edebilen kallus oluşumu elde edilememiştir. Tabloda yer alan kallus sayıları, anter üzerinde oluşan sert dokulu birer hücre gelişmesini ifade etmektedir. Bu oluşumlar, sağlıklı birer kallustan çok büyüyen organ parçaları şeklinde kalmıştır. Bu nedenle soğuk şoklarını içeren uygulamalar arasında sayısal anlamda anter gelişme oranları bakımından farklılıklar belirlenmiş olmakla birlikte her iki çeşitte de birbirine yakın anter gelişme oranının elde edildiği kontrol uygulaması, bundan sonraki deneme aşamasında kullanılmak üzere seçilmiştir.
Çizelge 1. Hasan dede ve Kalecik karası anterlerinde farklı sürelerde uygulanan soğuk şokunun anter gelişme oranları üzerine etkisi
Soğuk şoku süresi (saat)
|
Çeşit
|
Hormon bileşimi
|
Kültüre alınan anter sayısı
|
Gelişen anter oranı (%)
|
Anterde doku farklılaşması (adet)
|
72
|
Hasandede
|
2,4-D + BAP
|
132
|
0
|
0
|
|
|
NAA + kinetin
|
143
|
0
|
0
|
|
Kalecik karası
|
2,4-D + BAP
|
125
|
7.1
|
1
|
|
|
NAA + kinetin
|
90
|
1.1
|
2
|
96
|
Hasandede
|
2,4-D + BAP
|
154
|
1.9
|
3
|
|
|
NAA + kinetin
|
159
|
11.9
|
1
|
|
Kalecik karası
|
2,4-D + BAP
|
155
|
0.6
|
0
|
|
|
NAA + kinetin
|
161
|
1.8
|
0
|
120
|
Hasandede
|
2,4-D + BAP
|
165
|
0.6
|
1
|
|
|
NAA + kinetin
|
146
|
6.8
|
0
|
|
Kalecik karası
|
2,4-D + BAP
|
150
|
4.6
|
0
|
|
|
NAA + kinetin
|
163
|
2.4
|
0
|
Kontrol
|
Hasandede
|
2,4-D + BAP
|
110
|
5.3
|
0
|
|
|
NAA + kinetin
|
132
|
6.3
|
0
|
|
Kalecik karası
|
2,4-D + BAP
|
90
|
4.7
|
2
|
|
|
NAA + kinetin
|
84
|
2.8
|
1
|
Denemenin ikinci aşamasında, Nitsch ve Nitsch (1969) temel besin ortamındaki mineral tuz içeriği iki kat zenginleştirilen ve 0.1 mg/l düzeyinde 2,4-D/NAA ilave edilen ortamlara anter dikimi yapılmıştır. Soğuk uygulaması yapılmaksızın kültüre alınan 378 adet Hasandede çeşidine ait anterden 63’ünde anılan besin ortamında kallus oluşumu elde edilmiştir. Kalluslardan 32 adedi krem-beyaz renkli ve yumuşak bir yapıda olup embriyogenik yapılı kallus görünümünde olmuştur. Kalan 37 adet kallus ise dağınık yapılı, beyaz renkli ve köpük görünümlü olmuş, doku veya embriyo farklılaşmasına uygun nitelikli bulunmamıştır. Hasandede çeşidinde % 8.5 oranında muhtemelen mikrospor kökenli kallus oluşumu elde edildiği halde, Kalecik karası çeşidinde anterlerde kallus oluşumu meydana gelmemiştir. Hasandede çeşidi anterlerinden oluşan kalluslar alt kültüre alınmış ve bir miktar daha geliştirilmiş, ancak daha sonra hormonsuz ortama transfer edilen kalluslarda bir farklılaşma ve embriyo oluşumu elde edilememiştir.
Tartışma
Araştırmada uygun besin ortamı kullanıldığında çeşitler arasında farklı tepkiler bulunmakla birlikte asma anterlerinden kallus elde edilebileceği sonucuna ulaşılmıştır. Asma anter kültüründe doğrudan embriyo oluşumu yerine önce polen kallusu oluşumu ve daha sonra bu kallus dokusundan sürgün veya embriyo farklılaşması önceki çalışmalarda rapor edilmektedir (Rajasekaran ve Mullins 1979, Srinavason ve Mullins 1980, Zou ve Li 1981, Gray ve Mortensen 1987, Faure 1990).
Tomurcuklara uygulanan soğuk şokları, anter gelişme oranları bakımından çeşitler arasında ve besin ortamında kullanılan hormon kombinasyonları arasında farklılıklar ortaya çıkmasına neden olmuştur. Ancak bu farklılıkları birbiriyle ilişkilendirmek oldukça güçtür. Kullanılan anter sayılarının eşit olmaması nedeniyle istatistiksel bir değerlendirme yapılamadığı halde, Çizelge 1 incelendiğinde “çeşit x hormon kombinasyonu x soğuk şoku süresi” arasında bir etkileşim olduğu görülmektedir. Ancak kontrol uygulamasında çeşitlerin birbirine yakın değerler vermeleri de göz önünde bulundurulduğunda, uygulama parametreleri arasındaki bu etkileşimden yola çıkılarak bir sonuca varmanın sağlıklı olmayacağı yönünde bir görüş oluşmuştur. Denemenin ikinci aşamasında uygun besin ortamı bileşimi seçilmesi halinde soğuk uygulaması yapılmadan da kallus elde edilebileceği dikkate alınarak, ilk aşamadaki kallus oluşmama nedeninin; denemede yer alan çeşitler için uygun besin ortamı bileşiminin kullanılmaması olduğu kanısına varılmıştır.
Asma genotipleri, anter kültüründe kallus oluşturma bakımından farklı yanıtlar vermiştir. Hasandede çeşidinde androgenik
kallus elde edilebilirken, Kalecik karası çeşidi aynı besin ortamında kallus oluşturmamıştır.
Vitis türleri arasında kallus oluşturma ve somatik embriyogenezis özellikleri bakımından doku kültüründe karşılaşılan farklı tepkiler, bu konuda çalışan araştırıcıların çoğu tarafından belirtilmektedir (Hirabayashi ve ark. 1976, Chen 1986, Cersosimo 1986, Stamp ve Meredith 1988, Netzer ve ark.1991).
Çalışmamızda kallusların ploidi seviyesi belirlenmemiş olmakla birlikte, kallus dokusunun anterin içinden çıkması, bu dokunun haploid olma olasılığını güçlendirmektedir. Kaldı ki kallusun diploid olması halinde bile, anterlerden oluşan kallustan somatik embriyogenezis yoluyla elde edilen diploid bireyler arasında ortaya çıkan somaklonal varyasyonun da gözardı edilemeyecek kadar önemli olduğu ve bu yolla elde edilmiş mutantlar bulunduğu bildirilmiştir (Roustan ve Fallot 1993).
Yerli çeşitlerimizden Hasandede anterlerinde kallus oluşumu için uygun besin ortamı bileşimi belirlenmiştir. Soğuk şoklarının etkilerini daha net bir biçimde ortaya koyabilmek ve kallustan organ ya da embriyo farklılaşmasını sağlayabilmek için, elde edilen bu ilk bulguları değerlendirerek yeni denemeler yapılmasında yarar görülmektedir.
Kaynaklar
Altamura, M.M.,
Cersosimo, A., Majoli, C., and Crespan, M., 1992. Histological study of embryogenesis from anthers of
Vitis rupestris du Lot cultured
in vitro. Protoplasma 171: 134-141.
Cersosimo, A., 1986. In vitro anther culture in Vitis sp. (Part 1). Rivistal di Viticoltura e di Enologia 39 (12): 520-531.
Chen, Z., 1986. Induction of androgenesis in woody plants. Haploids of higher plants in vitro. pp:42-46., Springer Verlag, Berlin.
Faure, O., 1990. Embryons somatique de Vitis rupestris et embryons zygotiques de Vitis sp. morphologie, histologie, histochemie et developpement. Can.J. of Bot. 68: 2305-2315.
Gray, D.J., and Mortensen,J.A., 1987. Initiation and maintenance of long term somatic embryogenesis from anthers and ovaries of Vitis longii “Microsperma”. Plant Cell, Tissue and Organ Culture 9(1): 73-80.
Gresshof, P.M., and Doy, C.H., 1974. Erivation of a haploid cell line from Vitis vinifera and the importance of stage of meiotic development of anthers for haploid culture of this and anther genera. Z.Pflanzenphysiol. 73: 132-141.
Hirabayashi, T., Kozaki, I.,and Akihama,T.,1976. In vitro differentiation of shoots from anther callus in Vitis. HortSci. 11(5): 511-512.
Langenbucher,H., and Alleweldt,G., 1993. The effect of different pretreatments on induction of somatic embryogenesis in anthers of grapevine cv. Riesling. Vitis 3(1): 1-7.
Mauro, Mc., Nef, C., and Fallot, J., 1986. Stimulation of somatic embryogenesis and plant regeneration from anther culture of Vitis vinifera cv. Cabernet savignon. Plant Cell Reports 5(5): 377-380.
Mullins, M.G., 1971. Reports CSIRO Division of Horticultural Research for 1969-1971. Adelaide South Australia, p. 26-27.
Mullins, M.G., 1990. Applications of tissue culture to the genetic improvement of grapevines. Proc. of the 5th Int. Symp. on Grape Breeding. Vitis special.
Mullins, M.G., and Rajasekaran, K., 1979. Plantlets from cultured anthers of Vitis species and hybrids. Dept. of Agronomy and Horticultural Science, Univ. of Sydney N.S.W. 2006, Australia.
Netzer, M.H., Guellec, V., and Brancherd,M., 1991. A study of the performance during somatic embryogenesis of various grapevine rootstocks grown in vitro conditions giving chlorosis. Agronomie 11(2): 125-131.
Niimi, Y., 1987. Effect of light and chilling on callus formation from cultured anthers of grape. Bull. of Hiroshima Agri. College 8(2): 337-340.
Nitsch, J.P., and Nitsch, C., 1969. Haploid plants from pollen grains. Science 163: 85-87.
Rajasekaran, K., and Mullins, M.G., 1983. Influence of genotype and sex-expression of formation of plantlets by cultured anthers of grapevine. Agronomie 3: 233-238.
Roustan, J.P., and Fallot, J.,1993. Early in vitro evalution of antocyanin content in brage berries application to the selection of Vitis vinifera cv. Duras somaclones. J. Int. des Sci. de la Vigne et du Vin. 27: 225-229.
Srinavason, C. and Mullins, M.G., 1980. High frequency somatic embryo production from unfertilized ovules of grapes. Sci. Hort. 13: 245-252.
Stamp, J.A., and Meredith, C.P.,1988. Somatic embryogenesis from leaves and anthers of grapevine. Sci. Hort. 35: 235-250.
Yae, B.W., Monn, J.V., Cho, H.M., Lee, D.K., and Hwong, J.H., 1990. Factors affecting callus induction from anthers of Vitis in vitro. Research Reports of the Rural Development Administration Horticulture 32 (1): 15-21.
Zou, C.J., and Li, P.F., 1981. Induction of pollen plants of grape (
Vitis vinifera). Acta Bot. Sinica 23: 79-81.